Dectin—1在鼻窦抗真菌免疫中的作用
真菌性鼻窦炎(fungal rhinosinusitis,FR)是耳鼻咽喉头颈外科较为常见的一种特异性感染性疾病,其主要致病菌为曲霉菌,占80%以上,其他有念珠菌等。C型相关性植物血凝素-1(dendritic cell-associated C-type lectin-1,Dectin-1)是β-葡聚糖主要受体之一,而所有真菌细胞壁组成中β-葡聚糖占50%左右,从而可以推断,Dectin-1在机体抗真菌免疫反应中起着极为重要的作用。
机体免疫的第一道防线为非特异性免疫,其早期主要通过吞噬细胞(phagocytic cell),诸如巨噬细胞、中性粒细胞等,吞噬并杀灭侵入机体的病原体,然后进一步通过分泌细胞因子和趋化因子来激活获得性免疫系统(adaptive immune system)。机体通过模式识别受体(pattern recognition receptor,PRR)识别入侵的微生物,通过一系列的生化反应,开启机体对病原体的免疫反应。C型凝集素家族是PRRs的重要成员之一[1],其中树突状细胞相关性C型植物血凝素-1(Dectin-1)是β-葡聚糖的主要受体,从而可以推断,宿主抗真菌免疫反应过程中,Dectin-1发挥了极为重要的作用[2-3]。
1 Dectin-1的分子结构及其在机体内的分布特点
Dectin-1属于糖基化的型跨膜受体,该结构充分有利于信息的转导与传递,人和小鼠Dectin-1的氨基酸同源性达63%,且其均在细胞内和酪氨酸激活物样分子(hemITAM)结合[4],这种相关性为开展细胞学研究奠定了基础。有研究表明,与其他C型凝集素不同的是,Dectin-1与β-葡聚糖的结合不依赖于Ca,换言之,Dectin-1结合的配基表现出非金属离子依赖性[5-6]。大部分C型植物凝集素不能形成二聚体,因其杆状区缺乏半胱氨酸残基,但Dectin-1可以以单体的形式发挥功能,该结构特点使其更容易与配体结合并发挥免疫效应[5]。Ariizumi等[7]的研究还表明,小鼠Dectin-1的CTLD具有2个N-糖基化位点,而人的β-葡聚糖受体中是缺乏的,这也是人与小鼠Dectin-1结构较为显著的区别之一,在动物模拟实验中所表现的反应程度也会较人体有差异。
作为C型凝集素之一的Dectin-1被文献[8]证实其在单核巨噬细胞、中性粒细胞、NK细胞等细胞表面均有广泛的表达。通过相关免疫组化的方法检测发现,诸如大脑、肌肉等无明显抗原递呈与清除的巨噬细胞缺乏的组织,Dectin-1是不表达的;而在除此之外的大部分组织中均有不同程度的表达,其中表达水平最高的器官为肝脏、胸腺及肺[6,9-10]。
2 与Dectin-1结合的主要配體
文献[6]在测定酵母聚糖识别受体的cDNA文库时发现,β-葡聚糖能较好地与Dectin-1结合,从而第一次发现其为Dectin-1的主要识别配体,β-葡聚糖在真菌细胞壁组成中占了50%左右,虽然不同菌属的组成不尽相同,但均由β-(1,3)相连的β-D-吡喃葡萄糖基单元与β-(1,6)侧链相互连接而成[6,11-14]。更重要的是,具有β-(1,3)连接与β-(1,6)连接的葡聚糖可被Dectin-1特异性地识别,且识别的最小长度可为9-10个糖基的化合物[15]。此外,Dectin-1还可识别来自T细胞表面的内源性配体,从而激活T细胞发挥一系列的免疫反应,由此可推测,Dectin-1可能同时具备两个配体识别的结合位点,较其他受体而言,具有特异性双重识别配体功能[16-17],大大提高了在免疫反应中的效率。
3 Dectin-1的信号传导途径
Dectin-1在细胞内的信号传导有赖于酪氨酸激酶活化基序(immunoreceptor tyrosine-based activation,ITAM),当Dectin-1与配体特异性结合后,位于ITAM序列的酪氨酸残基通过酪氨酸激酶作用而发生磷酸化,随后结合具有SH2结构域的脾酪酸激酶(Syk)引起Syk发生磷酸化,介导下游信号的传导。下游的信号传导包括信号蛋白CARD9、T细胞活化的核因子(nuclear factor of activated T cells,NFAT)、分裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated pr
多态性的作用otein kinases。MAPK)及核因子κB(nuclear factor-κB,NF-κB)等一系列机体重要的信号传导源[18]。此外,Dectin-1也可与TLR家族受体协同完成部分信号传导。因此,文献[19-21]报道此信号传导激活NF-κB是通过Dectin-1/Syk和TLR/Myd88两条途径来实现的。4 Dectin-1与机体抗真菌免疫
Dectin-1能通过识别碳水化合物从而介导对真菌的识别并与之结合,其中被识别的真菌主要包括曲霉菌、酵母菌、念珠菌等[22-24]。Dectin-1在其细胞质尾部有与Fcγ受体相似的ITAM样基序,介导内吞作用及与抗体结合产生的炎性反应[25]。Dectin-1还能诱导细胞内呼吸爆发,促进产生大量参与炎症反应与免疫机制的细胞因子与趋化因子,如肿瘤坏死因子-α(tumor necrosis factor α,TNF-α)、CXCL2、白细胞介素-1β(interleukin-1β,IL-1β)、IL-1、CCL3、粒细胞集落刺激生物因子(granulocyte-macrophage colony-stimulating factor,GM-CSF)和IL-6等[5,24]。
真菌细胞壁组成中50%左右为β-葡聚糖,而Dectin-1作为β-葡聚糖的主要PRR在免疫细胞表面广泛表达,所以其在机体抗真菌免疫反应中起着极为重要的作用。机体主要是通过中性粒细胞与巨噬细胞的吞噬作用,然后诱导细胞内呼吸爆发,产生活性氧,杀伤被吞噬的真菌,
从而抵御真菌的感染。与此同时,Th1免疫应答反应、促炎性因子释放引起的炎症反应以及杀伤性T细胞的活化等也发挥了重要的作用。总的来说,机体内环境得以保持稳定,有赖于综上所有杀伤感染真菌的共同作用。
有研究表明,Dectin-1基因缺陷型小鼠感染念珠菌的概率会大大增加[3],并促使感染播散至胃肠道和肾脏[26]。而巨噬细胞在Dectin-1缺失的情况下,除了呼吸爆发维持正常,β-葡聚糖激发相关细胞因子生成的过程遭到彻底阻断,无法检测到TNF、IL-12等的表达。文献[26]报道,Dectin-1参与抗烟曲霉感染的免疫反应,小鼠人工致Dectin-1基因缺失后感染烟曲霉,体内细胞因子和化学因子水平不同程度降低,生存率明显下降,募集到炎症部位的中性粒细胞减少,ROS的產生也受到了抑制。其次小鼠在人工致Dectin-1基因缺失后对肺孢子菌更易感,同时其肺泡巨噬细胞也不产生ROS,从而无法激活Caspase-1,达到诱导IL-1β成熟的目的,而该过程对炎症发展和Th17细胞的分化都起着重要的作用[2]。同时,研究者在人中发现:Dectin-1基因突变人易反复罹患黏膜念珠菌病,同时细胞因子反应较常人低,且接受此人异基因造血干细胞移植的受者体内Dectin-1 Y238X基因的多态性和念珠菌定植、侵袭性曲霉菌感染的发生呈现正相关现象。综上均能推断出Dectin-1在人类抗真菌免疫中也发挥着极为重要的作用[27]。
5 真菌性鼻窦炎与Dectin-1
真菌性鼻窦炎(fungal rhinosinusitis,FR)是耳鼻咽喉头颈外科较为常见的特异性感染性疾病之一,致病菌主要是曲霉菌,占80%以上,其他还有念珠菌等[28]。有研究表明,真菌性鼻窦炎患者血清,而G+试验阳性主要以检测β-葡聚糖为目的。近年来的研究显示,Dectin-1可特异性识别烟曲霉暴露出的β-葡聚糖,并介导活性氧(reactive oxygen species,ROS)生成以发挥抗感染作用[3]。在巨噬细胞识别烟曲霉的过程中,β-葡聚糖是结合Dectin-1的特异性识别配体。Dectin-1还被证实可通过细胞质的ITAM样基序招募脾酪氨酸激酶(spleen tyrosine kinase,Syk)和Raf-1激酶,激发细胞内信号通路以表达细胞因子。Dectin-1与真菌性鼻窦炎患者体内的抗真菌免疫反应紧密联系。
Dectin-1在机体抗真菌免疫中发挥着极为重要的作用,包括真菌性肺炎、真菌性角膜炎等均有众多相关文献研究,可推测其在真菌性鼻窦炎中存在着类似的免疫反应过程。虽然,其与配体的相互作用机制、信号转导通路的调控机制等尚未完全被阐明,鼻窦抗真菌感染和Dectin-1在免疫调节中的主要过程也需进一步探究,但Dectin-1的发现及其广泛表达于组织、细胞中为其生物学研究奠定了基础,为机体抗真菌免疫的发展开拓了新的视野。目前,
临床确诊真菌性鼻窦炎依然依靠术中诊断,术前副鼻窦CT检出率不高,对Dectin-1的深入研究可协助提高术前诊断的准确率,并可为设计新的物打下坚实的基础,具有广阔的发展前景。
参考文献
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[7] Ariizumi K,Guo-Liang S,Shikano S,et al.Identification of a novel,dendritic cell-associated molecule,Dectin-1,by subtractive cDNA cloning[J].J Biol Chem,2000,275(26):20 157-20 167.
[8] Olynych T J,Jakeman D L,Marshall J S.Fungal zymosan induces leukotriene production by human mast ceUs through a deetin-1 dependent mechanism[J].J Allerg Clin Immunol,2006,118(4):837-843.

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